Party1: Propietats antiinflamatòries i antioxidants del mill (Eleusine Coracana (L.) Gaertn.) Varietats conreades a Sri Lanka

Per a més informació. contactetina.xiang@wecistanche.com

La prevalença de malalties inflamatòries i associades a l'estrès oxidatiu està augmentant a tot el món, creant una demanda creixent de noves fonts deantiinflamatoriagents iantioxidants. Aquest estudi es va centrar a determinar in vitro l'araquidonat {{0}}lipoxigenasa (A{5-LOX), la xantina oxidasa (XO), la hialuronidasa, les activitats inhibidores de l'explosió oxidativa i les propietats antioxidants de Ravi, Rawana , i varietats de mill Oshadha amb extractes etanòlics i metanòlics. Entre tots els extractes, l'extracte metanòlic d'Oshadha va mostrar les activitats inhibidores A5-LOX （ICsvalue∶ 484,42ug/ml) i XO （ICsvalue∶764,34ug/ml). Tots els extractes van mostrar menys del 50 per cent d'activitat inhibidora de la hialuronidasa a una concentració d'1 mg/ml, els extractes metanòlics van mostrar un potencial inhibidor moderat sobre les espècies reactives d'oxigen (ROS) generades a partir de fagòcits de sang sencera, amb valors d'IC0que oscil·laven. entre 26,9 i 27,7 ug/ml, en comparació amb l'ibuprofè (valor IC: 11,18 ug/ml). Tots els extractes van mostrar una potent inhibició de les ROS produïdes a partir de neutròfils polimorfonuclears aïllats de sang humana en comparació amb l'ibuprofè (valor ICs: 2,47 ug/ml) i els valors ICs dels extractes metanòlics i etanòlics van oscil·lar entre 0,29 i 0,47 ug/ml i 1,35 a 1,70 ug/ml. respectivament. Tots els extractes tenien quantitats significativament altes de compostos fenòlics inclososflavonoidesi el potencial d'eliminar el catió 2,2'-azino-bis(3-etilbenzotiazolina-6-sulfònic) (ABTS),2,2-difenil-1-picril-hidrazil( DPPH) i radicals d'oxigen. A més, van ser capaços de reduir els ions metàl·lics i quelar els ions metàl·lics acabant les reaccions generadores de radicals. Aquest és el primer informe de propietats inhibidores d'A5-LOX, XO, hialuronidasa i explosió oxidativa de qualsevol extracte de qualsevol varietat de mill cultivat a Sri Lanka. Les troballes van revelar el potencial d'utilitzar aquests extractes de mill com a fonts naturals de candidats a fàrmacs antiinflamatoris. A més, les troballes van indicar que les varietats Ravi, Rawana i Oshadha són bones fonts d'antioxidants. Per tant, el consum regular d'aquestes varietats de mill pot tenir un paper important en la prevenció i la gestió dietètica de les malalties associades a l'estrès oxidatiu.

Feu clic aquí per conèixer més productes

1. Introducció

Inflamacióés una reacció defensiva de laimmunesistema per eliminar estímuls nocius com patògens, cèl·lules danyades i irritacions al·lèrgiques o químiques, així com iniciar el procés de curació. Tot i que la inflamació és una resposta normal si no es controla, una inflamació excessiva condueix a moltes malalties agudes i cròniques. Actualment, la prevalença de malalties mediades per la inflamació està augmentant a tot el món, creant una demanda creixent d'agents antiinflamatoris nous i efectius [1, 2].

L'araquidonat 5-lipoxigenasa (A5-LOX) és un enzim clau que participa en la biosíntesi de potents mediadors de trastorns inflamatoris i reaccions al·lèrgiques. Catalitza la formació de leucotriens a partir de l'àcid araquidònic [3]. Els leucotriens són mediadors endògens en la patogènesi d'una sèrie de malalties inflamatòries com l'asma, la rinitis al·lèrgica, la bronquitis crònica, l'artritis reumatoide, la malaltia inflamatòria intestinal i les reaccions al·lèrgiques [3,4]. Per tant, la inhibició de l'A5-LOX és important en la prevenció i el tractament de diversos trastorns inflamatoris.

La xantina oxidasa (XO) catalitza l'oxidació de la hipoxantina a xantina i la xantina a àcid úric[5]. Els inhibidors de XO bloquegen la biosíntesi de l'àcid úric i, en conseqüència, redueixen els nivells d'àcid úric i l'estrès oxidatiu vascular. Durant l'acció catalítica de XO, es formen espècies reactives d'oxigen (ROS) i, per tant, XO també té un paper patogenètic en altres trastorns inflamatoris. En conseqüència, els inhibidors de XO són ​​importants en el tractament de diversos trastorns inflamatoris acompanyats de l'acció catalítica de XO [2,5].

La hialuronidasa és un enzim lisosomal que catalitza la hidròlisi de mucopolisacàrids com l'àcid hialurònic. En l'artritis reumatoide, la hialuronidasa degrada excessivament l'àcid hialurònic i en redueix la quantitat i el pes molecular, produint símptomes d'artritis [6]. La inhibició de la degradació de l'àcid hialurònic és fonamental i imprescindible per controlar les condicions patològiques mediades per la hialuronidasa [7].

En condicions inflamatòries, les cèl·lules immunitàries són atretes pel lloc de la inflamació. Durant les reaccions de defensa i immunològiques, les NADPH oxidases que resideixen a les cèl·lules immunitàries s'activen i generen ROS en grans quantitats creant una explosió oxidativa [1, 8]. Les quantitats baixes i moderades de ROS són beneficioses en diferents processos fisiològics. Tanmateix, la sobreproducció de ROS desregula les funcions cel·lulars que al seu torn millora la condició inflamatòria [8,9]. Per tant, la inhibició de l'explosió oxidativa induïda per ROS és un possible remei per prevenir i gestionar malalties mediades per inflamacions.

Durant la fosforilació oxidativa,radicals lliuresinclosos els ROS es formen com a subproductes [10].A més del metabolisme cel·lular normal, hi ha molts altres factors que condueixen a la formació de radicals lliures, i si la velocitat de generació de radicals lliures supera la taxa de neutralització, l'estrès oxidatiu es crea, i contribueix significativament a totes les malalties inflamatòries. Atès que els antioxidants són capaços de prevenir la formació de radicals lliures i extingir els radicals lliures, un equilibri entre antioxidants i radicals lliures és essencial per mantenir les funcions fisiològiques correctament [8,11,12].

El mill petit (Eleusine coracana(L.)Gaertn.) és el mill petit més important dels tròpics, i anteriorment s'han informat diverses propietats terapèutiques del mill [13-17]. Tanmateix, per a les varietats de mill que es conreen i es consumeixen actualment a Sri Lanka, hi ha una manca d'evidència científica sobre les propietats terapèutiques.

i els possibles beneficis per a la salut dels consumidors. En conseqüència, és imprescindible estudiar les propietats antiinflamatòries i antioxidants de les varietats de mill de Sri Lanka i reconèixer el seu potencial per millorar l'estat nutricional i de salut dels consumidors. La prevalença de malalties inflamatòries i associades a l'estrès oxidatiu està augmentant a tot el món, creant una demanda emergent de noves fonts d'agents antiinflamatoris i antioxidants [1, 2]. Amb aquests antecedents, el present estudi es va centrar a avaluar les varietats de mill de dit de Sri Lanka per a propietats antiinflamatòries in vitro en termes d'A5-LOX, XO, hialuronidasa, activitats inhibidores de l'explosió oxidativa i propietats antioxidants mitjançant diferents assajos antioxidants. .

2. Materials i Mètodes

2.1.Recollida i preparació de mostres. Les varietats de mill que es recomana per al cultiu a Sri Lanka pel Departament d'Agricultura, és a dir, Ravi, Rawana i Oshadha, es van recollir de l'Institut de Recerca i Desenvolupament de Cultius de Camp (FCRDI), Mahailuppallama, Sri Lanka. Aquestes varietats es van conrear en parcel·les experimentals a la Zona Seca del País Baixo, a FCRDI, Mahailuppallama, i les llavors van ser certificades pel Servei de Certificació de Llavors del Departament d'Agricultura de Sri Lanka.

Es van descascarar llavors de mill (TM 05C, Satake Corporation, Japó) i es van obtenir farines de cereals integrals per mòlta (Pulverisette 14, Fritsch, Alemanya) i passant per un tamís de 0,5 mm. Les farines de grans sencers es van extreure amb etanol i metanol per separat. La farina integral (100 g) es va extreure amb el dissolvent (400 ml) durant la nit a temperatura ambient (28 ± 2 graus) mitjançant un agitador magnètic i es va centrifugar a 4000 rpm durant 20 minuts. El sobrenedant es va recollir per separat i el residu es va reextreure dues vegades amb les mateixes condicions. Els sobrenedants es van combinar i es van evaporar fins a sequedat a pressió reduïda a 40 graus mitjançant un evaporador rotatiu (R-114, Büchi Labortechnik AG, Suïssa). Els extractes sense dissolvents es van emmagatzemar en recipients de vidre hermètics a -20 graus fins que s'han utilitzat per a l'anàlisi.

2.2.Enzims, productes químics i equips. Reactiu fenol Folin-Ciocalteu, clorur d'alumini, 2,4,{3}}Tri({2-piridil)-s-triazina (TPTZ), 2,2'-azobis (2-amidinopropà) diclorhidrat (AAPH),2,2-difenil-1-picrilhidrazil (DPPH), quercetina,6-hidroxi{-2,5,7,8-tetrametilcroman{{19} }àcid carboxílic (Trolox), àcid etilendiaminotetraacètic (EDTA), 2,2'-azino-bis(3-etilbenzotiazolina{-6-àcid sulfònic) sal diamoni (ABTS), fluoresceïna,3-( 2-Piridil)-5,6-difenil-1,2,4-triazina-p,pdisulfònic sal monosòdica

hidrat (ferrozina), araquidonat 5-lipoxigenasa, àcid linoleic, baicaleïna, xantina oxidasa, xantina, alopurinol, hialuronidasa, sal sòdica de l'àcid hialurònic, p-dimetilaminobenzaldehid, àcid gàl·lic, àcid tànnic, dimetilsulfòxid i i es van comprar a partir de Sigma-Aldrich, MO, EUA. Les HBS* plus i HBSS es van comprar a Thermo Fisher Sci-entific Inc., Massachusetts, EUA. Zymosan es va comprar a Wako Pure Chemical Industries Ltd., Osaka, Japó.

Luminol (3-aminoftalhidrazida) es va comprar a Alfa Aesar GmbH & Co KG, Karlsruhe, Alemanya. El medi de separació de limfòcits es va comprar a MP Biomedicals, Inc., Ohio, EUA. Tots els altres productes químics i reactius utilitzats en els experiments eren de graus ACS, HPLC i analítics. Per determinar la capacitat d'absorció del radical d'oxigen, es va utilitzar un lector de microplaques de fluorescència (SpectraMax-Gemini EM, Mole-ular Devices Inc., EUA). Per als assajos de quimioluminescència, es va utilitzar un luminòmetre (Luminoskan RS, Labsystems, Finlàndia). Per a la resta de bioassaigs, es va utilitzar un lector de microplaques (Spectra-Max Plus384, Molecular Devices Inc, EUA).

2.3.Determinació del contingut fenòlic total. El contingut fenòlic total (TPC) es va determinar segons el mètode Folin-Ciocalteu 【18】. L'extracte de mill (20ul) es va barrejar amb 110 ul de reactiu Folin-Ciocalteu diluït 10 vegades i 70 ul de solució de carbonat de sodi (10 per cent p/v) i es va incubar a temperatura ambient (RT) durant 30 minuts. L'absorbància es va mesurar a 765 nm. Es va utilitzar l'àcid gàl·lic per traçar la corba estàndard (y=0,0532x més 0,0339;r=0,9992), i el TPC es va calcular com a mg equivalents d'àcid gàlic (GAE) per 100 g de farina en un sec. base de pes.

2.4. Determinació del contingut total de flavonoides. El contingut total de flavonoides (TFC) es va determinar segons el mètode colorimètric de clorur d'alumini [19]. L'extracte de mill (100 ul) es va barrejar amb una solució de clorur d'alumini (2 per cent p/v, 100 ul), es va incubar durant 10 minuts a RT i es va mesurar l'absorbància a 415 nm. La quercetina es va utilitzar per representar la corba estàndard (y=0.0349x-0.2091; r²=0.9974）, i el TFC es va calcular com a mg equivalents de quercetina per 100 g de farina sobre una base de pes sec.

2.5.Determinació de l'activitat d'eliminació de radicals DPPH. La capacitat d'eliminar radicals DPPH es va determinar segons el mètode descrit per Blois [20]. Es va barrejar extracte de mil de dits (50 ul) amb 90 ul de metanol i 60 ul de solució de DPPH (0,02 per cent p/v) i es va incubar a RT a la foscor durant 10 minuts. Els valors d'absorbància de la mostra (As) i el control (Ac) es van mesurar a 517 nm. Trolox es va utilitzar com a estàndard. L'activitat d'eliminació de radicals DPPH com a percentatge d'inhibició es va calcular mitjançant l'equació (1). El valor d'IC ​​es va calcular mitjançant gràfics dosi-resposta.

2.6. Determinació de l'activitat d'eliminació de radicals catiònics ABTS. La capacitat d'eliminar els radicals catiònics ABTS es va determinar segons el mètode descrit per Re et al. [21] amb algunes modificacions. La solució de radical catiònic ABTS es va preparar incubant 10 mg d'ABTS en 2, 5 ml de persulfat de potassi a 37 graus C a la foscor durant 16 hores i diluint 7 vegades amb solució salina tampó fosfat de 50 mM (pH 7, 4). L'extracte de mill (12,5 ul) es va barrejar amb solució salina tampó fosfat (147,5 ul) i una solució de radical catiònic ABTS acabada de preparar (40 ul) i es va incubar a RT a la foscor durant 10 minuts. Els valors d'absorbància de la mostra (As) i el control (Ac) es van mesurar a 734 nm. Trolox es va utilitzar com a estàndard. L'activitat d'eliminació de radicals catiònics ABTS com a percentatge d'inhibició es va calcular mitjançant l'equació (2). El valor de l'IC es va calcular mitjançant gràfics dosi-resposta.

2.7.Determinació de la capacitat d'absorció de radicals d'oxigen (ORAC). L'ORAC es va avaluar segons el mètode descrit per Ou et al.[22] amb algunes modificacions. Es van preparar solucions de fluoresceïna (4,8 uM) i AAPH (40 mg/ml) en tampó fosfat de 75 mM (pH 7,4). L'extracte de mill (10 ul) es va barrejar amb 40 ul de tampó fosfat i 100 ul de fluoresceïna i es va incubar a 37 graus durant 10 minuts. Es va afegir AAPH (50ul) i es va mesurar la desintegració de la fluoresceïna a longituds d'ona d'excitació i emissió de 494 nm i 535 nm, respectivament, a 37 graus durant 35 minuts a intervals d'1 min mitjançant un lector de microplaques de fluorescència. Tro-lox es va utilitzar com a estàndard. Es van registrar els valors de l'àrea sota la corba (AUC) de la mostra (AUC), control (AUC) i Trolox (AUC-). El valor ORAC es va calcular mitjançant l'equació (3) on conc. significa concentració. Els resultats es van expressar en mg d'equivalents de Trolox per 100 g de farina sobre una base de pes sec.

2.8. Determinació de l'activitat quelant dels ions ferrosos (FIC).. La capacitat de quelar els ions ferrosos es va determinar segons el mètode descrit per Carter [23]. L'extracte de mill (100 ul) es va barrejar amb una solució de sulfat fèrric 1 mM (20 ul) i 40 ul d'aigua destil·lada. A continuació, es va afegir una solució de ferrozina 1 mM (40 ul) i es va incubar durant 10 minuts a RT. Els valors d'absorbància de la mostra (As) i el control (Ac) es van registrar a 562 nm. L'EDTA es va utilitzar com a estàndard. L'activitat de FIC com a percentatge de quelació es va calcular mitjançant l'equació (4).

2.9. Determinació del poder antioxidant reductor fèrric (FRAP). El FRAP es va determinar segons el mètode descrit per Benzina i Szeto [24] amb algunes modificacions. El reactiu FRAP es va preparar barrejant tampó d'acetat 300 mM (pH 3,6), clorur fèrric 20 mM i TPTZ 10 mM en una proporció de 10:1:1 i incubant a 37 graus C durant 10 minuts. L'extracte de mill (20 ul) es va barrejar amb 30 ul de tampó d'acetat i 150 ul de reactiu FRAP acabat de preparar, es va incubar a RT durant 8 minuts i es va registrar l'absorbància a 600nm. Trolox es va utilitzar per representar la corba estàndard (y=0.17x més 0.15;产{=1.00) i FRAP s'ha calculat com a mg d'equivalents de Trolox per 100 g de farina sobre una base de pes sec.

2.10.Determinació de l'activitat inhibidora de A5-LOX. Es va avaluar una activitat inhibidora de LOX segons el mètode descrit per Tappel [25] amb algunes modificacions. L'extracte de mill (10ul) es va barrejar amb 115 ul de tampó de fosfat de sodi 100 mM (pH 8,0) i 50 ul de solució A5-LOX (5000U/ml) i es va incubar a RT durant 10 minuts. La reacció es va iniciar amb l'addició de 25 ul d'àcid linoleic 0,08 mM. El canvi d'absorbància es va registrar a 234 nm a intervals d'1 min durant 10 min a RT, i es van registrar els valors de velocitat màxima (Vmxk) de la mostra (Vmaxs) i el control (Vmaxc). La baicaleïna es va utilitzar com a estàndard. Es va calcular una5-activitat inhibidora de LOX com a percentatge d'inhibició per edat mitjançant l'equació (5). El valor ICs es va calcular mitjançant gràfics dosi-resposta.

2.11.Determinació de l'activitat inhibidora de XO. L'activitat inhibidora de XO es va determinar segons el mètode descrit per Lee et al. [26] amb algunes modificacions. L'extracte de mill (10ul) es va barrejar amb 150ul de tampó de fosfat de sodi 50 mM (pH 7,4) i 20 ul de XO (0,15 U/ml) i es va incubar durant 10 minuts a temperatura ambiente. La reacció es va iniciar amb l'addició de 20 ul de xantina 0,1 mM. El canvi d'absorbància es va registrar a 295 nm a intervals mínims durant 15 minuts a RT, i es van registrar els valors Vmax de la mostra (Vmaxs) i el control (Vmaxc). Es va utilitzar alopurinol com a estàndard. L'activitat inhibidora de XO com a percentatge d'inhibició es va calcular mitjançant l'equació (6).ICs.value es va calcular mitjançant gràfics dosi-resposta.

2.12.Determinació de l'activitat inhibidora de la hialuronidasa. L'activitat inhibidora de la hialuronidasa es va avaluar segons el mètode descrit per Sahasrabudhe i Dedhar [27] amb algunes modificacions. L'extracte de mill (50ul) es va barrejar amb 10ul d'hialuronidasa （8400U/ml） i es va incubar a 37 graus durant 10 minuts. L'enzim es va activar afegint 20 ul de clorur de calci (12,5 mM) i incubant a 37 graus durant 10 minuts. La reacció es va iniciar amb l'addició de hialuronat de sodi (50 ul) i es va incubar a 37 graus C durant 40 minuts. A continuació, es van afegir 10 ul d'hidròxid de sodi 0, 9 M i 20 ul de borat de sodi 0, 2 M i es van incubar a 100 graus durant 3 minuts. Després de refredar-se a RT, es van afegir 50 ul de p-dimetilaminobenzaldehid 67 mM i es van incubar a 37 graus durant 10 minuts. Els valors d'absorbància de la mostra (As) i el control (Ac) es van mesurar a 585 nm. L'àcid tànic es va utilitzar com a estàndard. L'activitat inhibidora de la hialuronidasa com a percentatge d'inhibició es va calcular mitjançant l'equació (7).

2.13.Determinació de les activitats inhibidores de l'esclat oxidatiu. Els potencials antiinflamatoris en termes d'activitats inhibidores de l'esclat oxidatiu en sang humana sencera i neutròfils polimorfonuclears aïllats es van determinar mitjançant l'assaig de quimioluminescència millorada amb luminol [28, 29] amb algunes modificacions. Els experiments es van dur a terme al Centre de Medicina Molecular i Recerca de Medicaments del Dr. Panjwani, Centre Internacional de Ciències Químiques i Biològiques, Universitat de Karachi, Pakistan, i l'institut té l'autorització ètica per a estudis sobre sang humana del comitè d'ètica independent, ICCBS, UoK. . No:ICCB-S/IEC-008-BC-2015/Protocol/1.0.

2.13.1. Determinació de l'activitat inhibidora de l'esclat oxidatiu en sang humana sencera. La sang humana (1 ml) es va recollir asèpticament mitjançant punció venosa en un tub heparinitzat d'un voluntari sa i no fumador, que no va prendre cap medicament ni suplement durant més d'una setmana, i es va diluir (dilució 1:20) amb HBS més * (Hanks Balanced). Solució salina, que conté calci i magnesi). L'extracte de mill (25 ul) es va barrejar amb sang sencera diluïda (25 ul) i es va incubar a 37 graus C durant 15 minuts. A continuació, es van afegir 25 ul de zimosà opsonitzat sèric i 25 ul de luminol. La producció de ROS de ràfega oxidativa es va controlar durant 50 minuts mitjançant un luminòmetre amb exploracions repetides a intervals de 30 segons i un temps de mesura de punts d'1 s. L'ibuprofè es va utilitzar com a fàrmac estàndard. El percentatge d'inhibició es va calcular mitjançant l'equació (8).

on RLU és la lectura del luminòmetre en termes d'unitats de llum relatives (RLU) per al control i RLU és la lectura del luminòmetre en RLU per a la mostra. El valor d'IC ​​es va calcular mitjançant gràfics dosi-resposta.

2.13.2. Determinació de l'activitat inhibidora de l'explosió oxidativa en neutròfils polimorfonuclears aïllats. Es va barrejar sang humana sencera (10 ml) amb volums iguals de HBSS (solució de sal equilibrada de Hanks, sense calci i magnesi) i medi de separació de limfòcits (LSM) i es va permetre que els eritròcits s'assentessin durant 30 min a temperatura ambiente. A continuació, el plasma es va col·locar amb cura a LSM i es va centrifugar a 400 × g durant 20 minuts a RT. Es va eliminar el sobrenedant; Els glòbuls vermells del pellet resultant es van lisar barrejant-los amb aigua desionitzada freda, es van barrejar amb HBSS7 fred i es van centrifugar a 300 × g durant 10 minuts a 4 graus. El pellet es va rentar dues vegades i es va comprovar la viabilitat dels neutròfils polimorfonuclears resultants mitjançant el mètode d'exclusió del blau Trypan. La concentració de cèl·lules es va ajustar a 1 × 10 graus de cèl·lules/ml. Els neutròfils polimorfonuclears aïllats (25 山 l) es van barrejar amb extracte de mill (25 ul) i es van incubar durant 15 min a 37 graus. A continuació, es van afegir 25 ul de zimosà opsonitzat sèric i 25 ul de luminol i es va controlar la producció de ROS d'esclat oxidatiu durant 50 min mitjançant un luminòmetre amb exploracions repetides a intervals de 30 segons i ls punts de mesura del temps. L'ibuprofè es va utilitzar com a fàrmac estàndard. El percentatge d'inhibició es va calcular mitjançant l'equació (8).

2.14. Anàlisi estadística. Les dades de cada experiment es van analitzar estadísticament mitjançant el programari IBM SPSS Statistics (versió 20) i els resultats es van expressar com a mitjana ± error estàndard (SE). La significació estadística es va establir en un nivell de confiança del 95%. Es va utilitzar l'anàlisi unidireccional de la variància (ANOVA) i la prova de Tukey per determinar les diferències entre les varietats i els extractes. Es va utilitzar el coeficient de correlació de Pearson per a l'anàlisi de correlació.

Classificació de la inflamació

Inflamació aguda: caracteritzada principalment per enrogiment, inflor, dolor, etc., és a dir, inflamació composta principalment per la reacció del sistema vascular.

Inflamació crònica: principalment algunes malalties inflamatòries cròniques, com ara gastroenteritis crònica, hepatitis crònica, inflamació ginecològica recurrent i altres malalties.

Causa de la inflamació

Qualsevol factor que pugui causar danys als teixits pot ser causa d'inflamació, és a dir, els factors inflamatoris es poden agrupar en les següents categories:

(1) Factors biològics

Els bacteris, virus, micoplasmes, fongs, espiroquetes i paràsits són les causes més freqüents d'inflamació. La inflamació causada per patògens biològics també s'anomena infecció. Les exotoxines i les endotoxines produïdes pels bacteris poden danyar directament els teixits; la replicació viral a les cèl·lules infectades condueix a la necrosi cel·lular; determinats patògens antigènics danyen els teixits a través de respostes immunitàries induïdes després de la infecció, com ara les infeccions parasitàries i la tuberculosi.

2) Factors físics

Alta temperatura, baixa temperatura, substàncies radioactives, raigs ultraviolats, etc., i danys mecànics.

(3) Factors químics

Substàncies químiques exògenes com ara àcid fort, àlcali fort i trementina. Substàncies tòxiques endògenes com ara productes de descomposició del teixit necròtic i metabòlits com la urea acumulats al cos en determinades condicions patològiques.

(4) Cos estranger

Els cossos estrangers que entren al cos humà per diferents mitjans, com ara diversos metalls, restes de fusta, pols a l'aire, sutures quirúrgiques, etc., poden provocar diferents graus de respostes inflamatòries a causa de la seva diferent antigenicitat.

(5) Teixit necròtic

Causes com la isquèmia o la hipòxia poden provocar necrosi tissular, que és un potencial factor inflamatori. Les bandes hemorràgiques congestives i la infiltració de cèl·lules inflamatòries a les vores dels infarts nous són manifestacions de la inflamació.

(6) Al·lèrgies

Quan la resposta immune del cos és anormal, pot provocar una resposta immune inadequada o excessiva, provocant danys en els teixits i les cèl·lules i provocant inflamació. Com ara rinitis al·lèrgica, colitis, urticària, tuberculosi, glomerulonefritis i altres malalties.

Els antibiòtics són bactericides i antiinflamatoris, l'ús a llarg termini destruirà la flora normal del cos humà, matarà els bacteris bons, causarà un desequilibri de la flora intestinal, causarà una varietat de disfuncions intestinals i reaccions adverses i provocarà una infecció secundària, reduirà el cos. resistència. A més, els antibiòtics són metabolitzats principalment pel fetge i el ronyó, i l'abús d'antibiòtics és més probable que provoqui danys al fetge i a la funció renal. Podeu prestar atenció a les paraules "utilitzar amb precaució en pacients amb mala funció hepàtica i renal" a les instruccions de tots els medicaments antiinflamatoris. A més, els antibiòtics també poden augmentar les reaccions al·lèrgiques als fàrmacs. En els darrers anys, l'alta incidència de rinitis al·lèrgica i asma al·lèrgica està relacionada amb l'abús d'antibiòtics.

Els experiments han demostrat que l'extracte de Cistanche pipiensis ric en echinacòsid té un bon efecte de millora sobre la colitis; El glucòsid K de Cistanche i el pipòsid B tenen un bon efecte inhibidor sobre la secreció d'òxid nítric a les cèl·lules, demostrant que el seu bon efecte antiinflamatori.Cistancheés un material medicinal xinès amb el mateix origen que la medicina i els aliments. És una de les deu millors plantes medicinals xineses del meu país. És un tresor de les profunditats del desert i un tònic natural. Cistanche Cistanche té una història medicinal de gairebé 2,000 anys. Va ser gravat per primera vegada a "Shen Nong's Materia Medica". L'any 2005, Cistanche va ser inclòs a la "Farmacopea de la República Popular de la Xina" com a material medicinal genuí. Cistanche ha estat un bon tònic des de l'antiguitat, sense cap registre de toxicitat, la qual cosa demostra plenament la seva seguretat.